
選擇什麽(me) 樣填料孔徑的柱子是根據分子量的大小來確定的。填料孔徑對分離度的影響,120Å的色譜柱通常適用的範圍為(wei) 分子量<2000的,如果分子量太大,在填料為(wei) 120Å孔徑的柱子上分離度會(hui) 比較差,因為(wei) 樣品分子在色譜柱上有較好的保留是由於(yu) 可以進入到填料的微孔裏麵,與(yu) 鍵合在表麵上的C18長鏈相互作用,通常孔徑直徑需要大於(yu) 分子直徑的3倍以上才不會(hui) 對分析造成影響。因此一般化藥分子量不超過2000,生物藥不超過5000,用120Å,化藥2000以上,生物藥5000以上,則用300Å。
不同緩衝(chong) 鹽試用完後對色譜柱維護通用方法
流動相中含有緩衝(chong) 鹽時,大的原則是:使用前要過渡,使用後要清洗(清洗包括兩(liang) 個(ge) 步驟,一個(ge) 步驟是用來清洗緩衝(chong) 鹽,另一個(ge) 步驟是用來清洗強保留物質的),具體(ti) 請按如下方式保養(yang) 色譜柱。
用乙腈:水=10:90(如果是甲醇體(ti) 係則用甲醇:水=10:90)以1mL/min流速過渡30min,約7個(ge) 柱體(ti) 積(目的是防止緩衝(chong) 鹽在進入柱子時析出)。
步驟1)用乙腈:水=10:90(或甲醇:水=10:90)以1mL/min流速反向衝(chong) 洗 45min,約10個(ge) 柱體(ti) 積(目的是洗去緩衝(chong) 鹽,防止緩衝(chong) 鹽在色譜柱內(nei) 存留引起使用壽命下降);
步驟2)再用乙腈:水=80:10(或甲醇:水=80:10)1mL/min流速反向衝(chong) 洗45min,約10個(ge) 柱體(ti) 積(目的是洗去分析過程中積累的強保留物質,防止強保留物質在色譜柱內(nei) 進一步積累,影響以後的分析,也防止強保留物質的積累導致的柱壓升高),然後色譜柱保存在乙腈:水=80:10(或甲醇:水=80:10)中。
注意:
1)乙腈:水=10:90 或甲醇:水=10:90容易長菌,溫度越高越容易長菌,實驗表明,在28度條件下保存至第5天時發現長菌,不宜多配。
2)Welch公司的大部分色譜柱都能反向衝(chong) 洗或使用(色譜柱說明書(shu) 上會(hui) 有寫(xie) 明哪些色譜柱能反衝(chong) ,若沒寫(xie) ,則不能反衝(chong) ),如果您使用的色譜柱不能反向衝(chong) 洗或使用,則無需反衝(chong) ,本方法也適用,隻是反衝(chong) 的效果相對較好。
氨基柱正相使用與(yu) 反相使用區別以及色譜柱保存:
推薦先用正己烷-異丙醇(99:1)以 0.5mL/min的流速衝(chong) 10倍柱體(ti) 積,再根據流動相選用極性相近的流動相,相同流速衝(chong) 10倍柱體(ti) 積,最後換成流動相。正相使用時,不宜分析含醛基、羰基的化合物,不可用於(yu) 還原糖的分析;流動相要*脫氣,並不得含有羰基化合物和過氧化物(質量不好的乙mi、四氫呋喃含有少量)。
先用異丙醇以0.5mL/min的流速衝(chong) 30倍柱體(ti) 積,再依次以相同的流速相同的用量用乙腈衝(chong) 柱子,在過渡到流動相體(ti) 係。再換成流動相。反相條件下使用時,要特別注意控製pH值範圍,pH值越低越有發生水解的危險,流動相中水的比例越高當然也越有發生水解的危險。最li想的pH範圍在pH2.5~8範圍,建議水相<40%以下使用。
正相條件下,可以直接采用流動相平衡係統,使用後用異丙醇以0.5mL/min流速反向衝(chong) 洗60min,最後保存在異丙醇中,正向使用。
反相條件下使用,先用異丙醇以0.5mL/min流速過渡60min,再用甲醇或乙腈衝(chong) 洗色譜柱30min以過渡到反相模式。然後再更換成流動相進行平衡如果流動相中有緩衝(chong) 鹽,使用前用采用流動相同等比例的有機相和水相進行過渡,但水相中不含緩衝(chong) 鹽。過渡30min後再換成流動相進行平衡色譜柱。
1)新柱活化:用異丙醇0.5mL/min流速衝(chong) 洗4個(ge) 小時,再純乙腈、70%乙腈水各1mL/min流速各1小時,然後用流動相衝(chong) 洗至基線平穩進樣。
2)流動相配置:建議兩(liang) 項流動相預混合,並且流動相混合前分別采用水膜和有機相膜過濾水相和有機相,然後按照比例配製混合500mL的流動相於(yu) 同一溶劑瓶中,流動相於(yu) 同一溶劑瓶中(手動預混合好),充分搖晃溶劑瓶,使兩(liang) 項混合均勻,采用超聲脫氣20分鍾,如果有變熱的跡象,放置回到室溫。
將流動相放於(yu) 儀(yi) 器上,打開儀(yi) 器泵,檢測器,在線脫氣機等電源,設置:柱溫:45℃,檢測器溫度:40℃,流速:1mL/min,打開RID檢測器參比池,衝(chong) 洗30min以後,將示差檢測器的循環按鈕打開,使得流出液從(cong) 的RECYCLE管路流出(回流管液體(ti) 流出去20min後),再將回流管放置於(yu) 流動相瓶子中,進行流動相循環。
3)循環一晚上以後,第二天將流動相循環切換至waste流路,關(guan) 閉參比池,衝(chong) 洗樣品池30min以後,基線平穩,進樣檢測。
4)如果1mg/mL濃度乳糖還是沒有出峰,配置一個(ge) 濃度為(wei) 5mg/mL濃度。
注意:晚上循環時一定是分析樣品的流動相色譜條件設置。
Welch Xtimate® Sugar-Ca,Sugar-H色譜柱使用維護注意事項
Xtimate® Sugar-Ca,Sugar-H,填料屬於(yu) 聚苯乙烯-二乙烯基苯聚合物基質,磺化強陽離子交換樹脂,在使用過程中首先要避免的情況是流動相試劑汙染色譜柱,特別避免使用純有機溶劑衝(chong) 洗造成色譜柱填料出現溶脹,改變填料性質造成色譜柱分離效果失去。
Sugar-Ca針對藥典測定甘露醇和山梨醇,也可以用測定碳水化合物,各種單糖或聚合糖測定,流動相係統和樣品溶劑基本采用純水體(ti) 係。
Sugar-H針對藥典中利巴韋林測定,也可以用於(yu) 測定碳水化合物或有機酸類物質分離,所用流動相是硫酸水溶液pH為(wei) 2.5左右。使用完後基本上采用流動相低溫4度封存,在封存過程中時間過久也會(hui) 有所長菌,故封存一段時間(2~3)周最好換新流動相封存,若長期不使用可以在流動相中加入5%乙醇做改善試劑,避免長菌現象。
當主峰峰形有所變化,柱效有所降低時,需要進行再生;
Sugar-Ca保護柱的再生方法與(yu) Sugar-Ca分析柱方法一致,根據相關(guan) 的樣品純度有不同的變化,越是天然物(尤其是含有那些重金屬和過渡金屬元素或是有機酸的樣品),越需要經常地對柱子進行再生,因為(wei) 它們(men) 會(hui) 與(yu) 柱子發生置換。可以通過注射蔗糖來測試柱子的置換情況。如果蔗糖的峰有拖尾,那麽(me) 柱子需要做以下處理: 配製500mL的再生溶液(Ca EDTA 500mg/L Cas:23411-34-9),把柱子流路方向反過來,在85℃以 0.5mL/min的流速衝(chong) 洗一整夜。再生之後回到正常方向使用。
Sugar-H柱子的再生方法根據相關(guan) 的樣品純度有不同的變化,越是天然物,(尤其是含有那些重金屬和過渡金屬元素或是有機酸的樣品),越需要經常地對柱子進行再生,因為(wei) 它們(men) 會(hui) 與(yu) 柱子發生置換。如果主峰有拖尾,那麽(me) 柱子需要做以下處理: 配製 500mL的再生溶液(pH2.5的稀硫酸),把保護柱和分析柱作為(wei) 整體(ti) 將流路方向反過來,在85℃以 0.5mL/min的流速衝(chong) 洗一整夜。再生之後回到正常方向使用,當柱子反衝(chong) 時很重要的一點是需要保持溶劑的溫度從(cong) 而確保正確的衝(chong) 洗,用冷的溶劑將會(hui) 延緩衝(chong) 洗的過程。